Elegir centrífuga por el precio o por la marca que ya conoces suele salir caro a medio plazo: el modelo equivocado no rinde lo que promete o se queda corto en cuanto cambia el tipo de muestra que se procesa. Estas son las variables que de verdad condicionan la decisión.
Velocidad y fuerza centrífuga relativa (RCF)
La velocidad en rpm no es comparable entre modelos si no se tiene en cuenta el radio del rotor: dos centrífugas con el mismo rpm pueden generar RCF muy distintas. Para protocolos de biología molecular o separación de suero suele bastar con equipos de sobremesa que alcancen entre 4.000 y 15.000 rpm; para microcentrífugas de uso intensivo en PCR, valores por encima de 18.000 RCF (como los 18.845 RCF de la BOECO MC-24) marcan la diferencia en tiempo de protocolo.
Refrigeración: cuándo es imprescindible
Si se trabaja con muestras sensibles a la temperatura (proteínas, algunas líneas celulares, determinadas enzimas), una centrífuga sin refrigeración puede degradar la muestra solo por el calor generado durante el giro. Modelos como la BOECO U-320R o la M-240R permiten mantener la cámara por debajo de la temperatura ambiente durante ciclos largos, algo que no es negociable en estos protocolos.
Tipo de rotor: oscilante, angular o para microplacas
El rotor angular separa más rápido pero puede resuspender el sedimento con más facilidad al detenerse; el oscilante da una separación más limpia y es preferible para tubos con gradiente. Si el laboratorio trabaja con microplacas ELISA o de PCR, conviene comprobar que el rotor específico esté disponible antes de decidir el modelo, no después.
Capacidad real, no capacidad de catálogo
Un rotor de 6 x 250ml no sirve de nada si el día a día del laboratorio son tubos de 1,5ml en series de 24. Conviene dimensionar la centrífuga por el volumen de trabajo habitual, dejando margen para picos, y no por la cifra más alta que aparece en la ficha técnica.
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